I. 用n-Octyl-β-D-glucoside提取大肠杆菌乳糖输送体

1. 试剂

·从lacY recombinant大肠杆菌T206制备的膜泡

·n-Octyl-β-D-glucoside

·胆酸钠 （Sodium cholate）

·Dithiothreitol （DTT）

·取自大肠杆菌的磷脂 （Avanti Biochem.公司）

·DEAE-Sepharose CL-6B （GE Healthcare公司）

·磷酸钾 （Potassium Phosphate）

·乳糖 （lactose）

·尿素 （生化级）

·磷酸

2. 方法

以下操作，在没有特指时的温度是指4℃，用Vortex mixer搅拌。

1） 要得到约10 mg的蛋白质，可以取外翻型膜泡 （inside-out vesicles） 12.5 mg，加入1 ml缓冲液 （50 mmol/l 磷酸钾，pH7.5、0.5 mmol/l DTT，10 mmol/l乳糖）制成悬浊液。

2） 在室温条件下，边搅拌，边滴加等量的尿素溶液（10 mmol/l）。

3） 在冰浴中放置10分钟后，在175,000× 的速度条件下离心1小时。

4） 沉淀用1.75 ml缓冲液 （50 mmol/l磷酸钾，pH7.5） 制成悬浊液。边搅拌，边加入胆酸钠溶液 （20%w/v，pH7.8），终浓度为6%。

5） 在冰浴中放置20分钟后，在26,000×g的速度条件下离心15分钟。

* 以上操作是为了去除膜中不需要的蛋白质。

6） 沉淀用5 ml缓冲液 （10 mmol/l磷酸钾，pH5.8） 制成悬浊液，离心，重复此步骤1-2次。

7） 沉淀用1.45 ml缓冲液 （10 mmol/磷酸钾，pH5.8） 制成悬浊液，加入17.5 l DTT溶液 （100 mmol/l），13 mg乳糖，131 l磷脂溶液 （50 mg/ml），搅拌均匀。

8） 在上述溶液中加入146 µl n-Octyl-β-D-glucoside （15% w/v，10 mmol/l磷酸钾，pH5.8），使终浓度为1.25%，

蛋白质/磷脂/去垢剂的比例约为1:3:10。

9） 搅拌时请注意不要起泡沫，在冰浴中放置10分钟后搅拌，然后在175,000× 的速度下离心1小时。

10） 取上清，用磷酸溶液 （10 mmol/l 磷酸, 含1.25% n-Octyl-β-D-glucoside） 调节pH至5.8。

11） 用DEAE-Sepharose 纯化柱纯化1 ml蛋白质提取液 （含约300 µg 蛋白质）。

溶出液：10 mmol/l 磷酸钾，pH5.8，1 mmol/l DTT，20 mmol/l乳糖, 0.25 mg 磷脂/ml, 1.25%（w/v） n-Octyl-β-D-glucoside

II. 用 n-Heptyl-β-D-thioglucoside提取肠炎弧菌的膜结合性 5'-核苷酸酶

1. 试剂

·采用French Pressure法制备的膜泡

·n-Heptyl-β-D-thioglucoside

·EDTA-2K

·Dithiothreitol （DTT）

·Tricine

·MOPS

·Tris

·氯化钠

·硫酸镁

·2-Mercaptoethanol

·DEAE-Sepharose CL-6B （GE Healthcare公司）

2. 方法

以下操作，在没有特指时的温度是指4℃。

1） 取肠炎弧菌的的膜泡 （含145 mg蛋白质） 用30 ml缓冲液（3 mmol/l Tricine-Tris、pH8.0、0.5 mmol/l EDTA-2K、1 mmol/l 2-Mercaptoethanol） 制成悬浊液。在冰浴中轻轻地搅拌约30分钟后，105,000×g离心1小时。

2） 加入含有n-Heptyl-β-D-thioglucoside 40 mmol/l的缓冲液（20 mmol/l MOPS-Tris、pH7.5、5 mmol/l硫酸镁、1 mmol/l DTT） 制成悬浊液，蛋白质浓度约为1 mg/ml。在冰浴中轻轻地摇匀约15分钟。

3） 105,000×g离心1小时，得到5'-核苷酸酶的上清。

4） 用DEAE-Sepharose 纯化柱纯化上清。溶出液：50 mmol/l MOPS-Tris、pH 8.0、5 mmol/l硫酸镁、1 mmol/l DTT、40 mmol/l n-Heptyl-β-D-thioglucoside、100→400 mmol/l （梯度）氯化钠

III. 用CHAPS提取巨噬细胞的细胞骨架

1．试剂

·S.typhimurium LPS （Difco公司）

·胎牛血清 （FBS）

·肝素 （heparin）

·Dulbecco's MEM （DMEM）

·Plasticcoverslip （SUMITOMO BAKELITE 公司、celldesk）

·PIPES

·HEPES

·GEDTA

·Phorbol 12-myristate 13-acetate （PMA、Sigma公司）

·氯化镁

·CHAPS （在硅胶干燥器中干燥约2周后使用）

2. 方法

1） 用灭菌蒸馏水将 S.typhimurium LPS配制成200 µg/ml。给小鼠 （SLC-ICR、7-10周龄） 腹腔注射，剂量为0.25 ml/只。

2） 5-6天后，用10 mmol/l HEPES（添加10% FBS、10 U/ml肝素、含DMEM pH7.1）洗净腹腔，收集细胞。

3） 用4℃的DMEM将贴壁的腹腔细胞离心洗净3次 （1,000 rpm，10分钟/次）。

4） 用含有10% FBS的DMEM调节细胞浓度至10e6个/ml，移至培养皿中。

5） 在4℃的条件下，用FBS浸泡盖玻片一个晚上，然后用DMEM洗净10分钟，将盖玻片放入上述培养皿中。在CO₂培养箱中37℃下孵育20分钟 （每一张盖玻片需要细胞液1 ml）。

6） 将盖玻片一张一张放入4℃含有DMEM的培养皿中，用巴氏吸管吸掉非贴壁细胞。

7） 在含有10% FBS的DMEM中加入稀释的PMA，在CO₂培养箱中37℃下孵育20分钟。

8） 用室温DMEM将贴付着细胞的盖玻片洗净10分钟。

9） 用室温的PHEM 缓冲液 （60 mmol/l PIPES、25 mmol/l HEPES、10 mmol/l GEDTA、2 mmol/l氯化镁、pH6.9）

清洗2次 （10分钟/次）。

10） 预先将盖玻片放置在37℃的PHEM缓冲液中约5分钟。

11） 用PHEM缓冲液配制0.5%CHAPS溶液^*2,^*3，取15 ml加入^*4直径为6 cm的培养皿中，将盖子反过来盖在培养皿上，放置在37℃培养箱中。

将贴付着细胞的盖玻片放在如上的培养皿中（2张盖玻片/1个培养皿），放置3分钟后会露出细胞骨架，这时轻轻振摇培养皿45-60秒。

12） 用37℃的PHEM 缓冲液洗净3次（分别为2-3分钟，10分钟，10分钟），清洗后放回到室温的PHEM 缓冲液里，细胞骨架样品制备完成。

*1 清洗不足的话，会降低细胞骨架露出率。

*2 CHAPS溶液要在使用前1小时内配制，混合时注意不要产生泡沫。CHAPS的浓度一定要准确地配制成0.5% （8.132 mmol/l ）。如果浓度过高，会增加从盖玻片上掉落的细胞，一部分的细胞骨架会溶解下来。如果浓度过低，会导致细胞膜的溶解效果差。

*3 CHAPS的溶液量，1个直径13.5 mm的培养皿需要6 ml以上。

*4 请注意振摇过强的话，会增加细胞脱落。

IV. 用CHAPS从原生质体分离液胞

1. 试剂

·从Atriplex gmelini的绿叶中制得的原生质体 （1.2 mol/l山梨糖醇中分离）

·CHAPS

·GEDTA （EGTA）

·HEPES

·山梨糖醇

·Tris

2．方法

1） 取1 ml 原生质体放入巴氏瓶中^*1。

2） 加入50 ml缓冲液 （1.0 mol/l山梨糖醇、1 mmol/l GEDTA、0.5 mmol/l CHAPS、20 mmol/l HEPES-Tris、pH8.0）。120×g离心3分钟。

3） 收集上清液中的液胞 （约1.2 ml）^*2，放入巴氏瓶中。

4） 用缓冲液 （1.0 mol/l 山梨糖醇、20 mmol/l HEPES-Tris、pH8.0） 稀释19倍。120×g离心3分钟, 回收上清液中悬浮的液胞。

*1 用0.5 mol/l 山梨糖醇分离原生质体时，添加10% Ficoll 400等，使原生质体悬浮。

*2 原生质体的上清液不浓缩的话， 使用Ficoll 400等，需要提高溶液的比重。